PERLAKUAN FOSFIN FORMULA CAIR UNTUK MEMBEBASKAN Thrips parvispinus PADA BUNGA POTONG KRISAN DAN MAWAR

PERLAKUAN FOSFIN  FORMULA CAIR UNTUK MEMBEBASKAN Thrips parvispinus PADA BUNGA POTONG KRISAN DAN MAWAR

M. Achrom, Salbiah, Sunarto, Suwirda

Balai Uji Terap Teknik dan Metode Karantina Pertanian

Jl. Raya Kampung Utan, Setu, Desa Mekar Wangi, Cikarang Barat, Bekasi, Indonesia

ABSTRAK

Thrips merupakan serangga yang potensial terbawa lalu lintas bunga potong yang akan menjadi kendala dalam kegiatan ekspor maupun impor sehingga memerlukan tindakan perlakuan karantina untuk membebaskannya.  Fosfin formula cair (2% PH₃ dan 98% CO₂) merupakan salah satu alternatif fumigan pengganti metil bromide  yang perlu diuji keefektifanya serta pengaruhnya terhadap kualitas. Pengujian keefektifan  fosfin formula cair terhadap Thrips parvispinus dan pengaruhnya terhadap bunga potong krisan dan mawar dilakukan dengan 3 tahap pengujian yaitu : penentuan waktu efektif pada konsentrasi PH₃  250 ppm, pengujian pengaruh fumigasi  fosfin formula cair terhadap bunga potong krisan dan mawar pada dua waktu efektif dan validasi hasil uji keefektifan dan pengaruh terhadap bunga potong krisan dan mawar. Dari hasil pengujian diketahui bahwa waktu efektif pada konsentrasi 250 ppm melebihi 12 jam sehingga  pengujian dilanjutkan pada konsentrasi yang lebih tinggi. Dengan konsentrasi 380 ppm  waktu papar 12 jam pada suhu 25 - 26 ^oC fosfin formula cair efektif membebaskan Thrips parvispinus tanpa merusak komoditas bunga potong krisan maupun mawar.

Kata kunci : Fumigasi, fosfin formula cair, Thrips parvispinus, krisan, mawar

PENDAHULUAN

Indonesia sebagai negara tropis yang mempunyai keanekaragaman hayati yang tinggi merupakan penghasil produk florikultura (tanaman hias) yang sangat potensial sebagai pemasok ke negara-negara non tropis dan juga sebagai importir dari berbagai negara.  Volume ekspor tanaman hias pada tahun 2012 mencapai  6.493,04 ton dengan nilai 18.813.074 US $  sedangkan volume impor pada tahun 2012  mencapai 12.906,02 ton dengan nilai  9.997.477 US $ (Dirjen Hortikultura 2013).

Lalu lintas tanaman hias tidak menutup kemungkinan terbawanya Organisme Pengganggu Tumbuhan Karantina (OPTK) yang mengancam pertanian Indonesia serta mengganggu kelangsungan perdagangan ke beberapa negara tujuan ekspor. Dari beberapa OPTK yang paling potensial terbawa pada lalu lintas media pembawa berupa tanaman hias adalah dari kelompok thrips.   Beberapa spesies thrips  yang penting antara lain  Frankliniella occidentalis  sebagai OPTK A1  serta Thrips parvispinus merupakan OPTK negara tujuan ekspor yang banyak ditemukan di Indonesia. 

Fumigasi merupakan metode yang memungkinkan dilakukan untuk mengeradikasi OPT pada komoditas yang akan di lalu lintaskan.  Thrips diketahui sangat peka terhadap fumigasi  fosfin dibandingkan dengan serangga lain seperti aphid dan larva lepidoptera pada suhu  24 ^oC (Karunaratne et al., 1997). Fumigasi fosfin 250 ppm selama 18 jam pada suhu 2 ^oC dapat mengeradikasi 100% Frankliniella occidentalis  (Liu, 2008).

Fumigasi merupakan cara yang mudah untuk dilakukan, namun demikian perlu dicari fumigan yang ramah lingkungan, efektif, cepat dan tidak merusak produk yang akan difumigasi  yaitu tanaman hias berupa bunga potong  atau bahan perbanyakan yang memiliki kadar air tinggi dan sesuai dengan kondisi suhu di Indonesia.

Fosfin formulasi cair yang dapat diaplikasikan pada komoditas dengan kadar air tinggi diharapkan dapat dijadikan sebagai alternatif perlakuan pada komoditas tanaman hias untuk mengeradikasi thrips pada kondisi lingkungan di Indonesia, oleh karena itu uji terap penggunaan fosfin formula cair sebagai alternatif perlakuan pada tanaman hias untuk mengeradikasi OPT/OPTK kelompok thrips perlu dilakukan.  Tujuan uji terap ini adalah untuk mengetahui pengaruh konsentrasi dan lama waktu perlakuan fosfin formula cair terhadap thrips tanpa merusak kualitas bunga potong krisan dan mawar.

BAHAN DAN METODE

Waktu dan Tempat

Uji terap ini dilakukan di Balai Uji Terap Teknik dan Metode Karantina Pertanian, Jalan Raya Kampung Utan-Setu, Desa Mekar Wangi Kecamatan Cikarang Barat, Kabupaten Bekasi, Jawa Barat (19 m dpl). Waktu pelaksanaan mulai  Januari – Desember  2014.

Alat dan Bahan

Alat dan bahan yang digunakan antara lain:  kotak fumigasi, timbangan digital, meteran, self container breathing aparatus (SCBA), alat pengukur konsentrasi (X-am 7000), phosphine detektor, selang distribusi, fosfin formula cair (PH₃ 2%  dan CO₂ 98%), telur, nimfa dan imago Thrips parvispinus, canister, bunga potong krisan varietas evalin, bunga potong mawar varietas sexy red.

Metode

1.   Persiapan : Merupakan tahap perbanyakan massal thrips. Thrips dikumpulkan dari tanaman bunga krisan di lapangan, kemudian dilakukan identifikasi. Imago thrips  dipelihara secara massal pada tanaman krisan yang sedang berbunga di dalam rumah kaca sehingga akan menghasilkan telur, nimfa, pupa dan imago sebagai F1, serangga F1 ini yang digunakan sebagai serangga uji.

2.   Uji penentuan waktu efektif : untuk menentukan kisaran waktu minimal yang diperlukan dalam pelaksanaan perlakuan fumigasi fosfin formula cair yang diduga efektif yang dapat menyebabkan mortalitas thrips 100% pada konsentrasi fosfin formula cair 250 ppm. Lama waktu yang digunakan sebagai waktu papar terdiri dari kontrol, 0.5, 1, 2, 3, 6, 9, 10, 11, 12, 13, 15 jam dengan ulangan sebanyak 4 ulangan. Nimfa dan imago masing-masing berjumlah 25 ekor per unit percobaan yang diinfestasikan kedalam bunga potong dan ditempatkan dalam wadah kaca yang ditutup kain. Sedangkan pengujian terhadap stadia telur  dilakukan dengan mengambil dan memotong daun dan bunga krisan yang terinfestasi thrips stadia dewasa dan terdapat tonjolan telur yang ditempatkan dalam wadah kaca yang ditutup kain, kemudian diletakkan dalam kotak fumigasi yang kedap udara dan telah.

3.   Uji pengaruh perlakuan fumigasi fosfin formula cair terhadap bunga potong krisan dan mawar menggunakan dua waktu yang efektif yang menunjukkan hasil  mortalitas thrips 100% dan kontrol,  perlakuan diulang sebanyak 10 kali. Bunga potong yang telah difumigasi ditempatkan dalam suatu wadah yang diisi dengan larutan campuran gula, asam sitrat, (Komunikasi pribadi, Yadi Supriyadi 2014)  dan akan dilihat selama 7 hari apakah terjadi perubahan seperti perubahan warna, cepat layu, dan daya simpan dibandingkan kontrol.

4.   Uji validitas : Uji ini dilakukan terhadap perlakuan konsentrasi 250 ppm pada waktu yang  menunjukkan mortalitas thrips 100% tanpa merusak kualitas tanaman hias berupa bunga potong pada pengujian sebelumnya. Pada uji ini dilakukan 4 perlakuan dengan  6 ulangan. Thrips yang digunakan adalah thrips yang menginfestasi  bunga potong  secara alamiah dari lapangan.  Pengujian terhadap stadia nimfa dan imago masing-masing berjumlah  25 ekor per unit percobaan yang diinfestasikan kedalam daun bunga potong dan ditempatkan dalam wadah kaca yang ditutup kain. Sedangkan pengujian terhadap stadia telur  dilakukan dengan mengambil dan memotong bunga krisan yang terinfestasi thrips dewasa dan di tempatkan dalam wadah kaca yang ditutup kain. Bersamaan dengan itu, bunga potong ditempatkan  dalam box kardus, kemudian keduanya diletakkan dalam kotak fumigasi yang kedap udara. Perlakuan uji validitas fumigasi fosfin formula cair terhadap thrips  pada bunga potong  yaitu : fumigasi bunga potong krisan + thrips dari lapangan, fumigasi bunga potong mawar  + thrips dari lapangan, tanpa fumigasi bunga potong krisan + thrips dari lapangan dan tanpa fumigasi bunga potong mawar + thrips dari lapangan.

5.   Pengamatan : Setelah semua tahapan fumigasi dilakukan, untuk pengamatan thrips sebelum dilakukan penghitungan mortalitas maka perlu di inkubasi terlebih dahulu. Menurut Park et al. (2013) thrips perlu diinkubasikan terlebih dahulu dalam ruang inkubasi selama 1-3 hari untuk nimfa dan imago, sementara untuk telur diinkubasikan selama 5-7 hari. Setelah masa inkubasi, dilakukan proses penghitungan jumlah mortalitas pada setiap perlakuan. Setelah diketahui jumlah mortalitas yang terjadi pada setiap perlakuan kemudian akan dihitung persentase mortalitasnya yang nanti akan diuji secara statistik.  Pengamatan meliputi mortalitas thrips pada masing-masing stadia, kerusakan komoditas/kualitas bunga potong (perubahan warna, kesegaran) dan daya simpan bunga potong. 

Analisis Data

Data persentase mortalitas  di analisis dengan menggunakan  program minitab dan data kerusakan tanaman hias dianalisis dengan menggunakan analisa non parametrik Mann-Whitney.  Penilaian kerusakan tanaman hias berdasarkan skoring yaitu : 0 = tidak rusak, 1 = sedikit rusak, 2 = sangat rusak,  indikasi rusak yaitu adanya perubahan warna daun, adanya kelayuan, water soaking.

HASIL  DAN  PEMBAHASAN

Uji penentuan waktu efektif

Perlakuan fosfin formula cair  pada konsentrasi 250 ppm  dengan waktu papar  berbeda pada suhu 25 - 26 ^oC  terhadap Thrips parvispinus diperoleh data mortalitas sebagai berikut  (Tabel 1).

Tabel 1. Rerata  mortalitas (%) Thrips parvispinus  pada berbagai waktu papar

Perlakuan (Jam)		Stadia
	Nimfa	Imago	Telur
Kontrol	0   a	0  a	Menetas
0,5	95  b	93.75  b	Menetas
1	95.75  b	100  b	Menetas
3	99  b	96.25  b	Menetas
6	97.75  b	100  b	Menetas
9	99.75  b	100  b	Menetas
10	100  b	100  b	Menetas
11	98.25  b	100  b	Menetas
12	100  b	100  b	Tidak Menetas
13	100  b	100  b	Tidak menetas
15	100  b	100  b	Tidak menetas

 Ket : angka yang diikuti  huruf yang sama menunjukan  tidak berbeda nyata pada uji Tukey’s taraf  kepercayaan  5%.

Perlakuan fosfin formula cair (liquefied phosphine)  pada konsentrasi 250 ppm  dengan waktu papar  6 jam pada suhu 25 - 26 ^oC  terhadap thrips dewasa sudah dapat menyebabkan mortalitas mencapai 100%. Adapun mortalitas nimfa 100% dapat dicapai dengan waktu papar 12 jam pada suhu 25- 26^oC. Sedangkan mortalitas telur 100% dapat dicapai dengan waktu papar lebih dari 12 jam pada suhu ≤ 26 ^oC. Dari pengujian ini diketahui bahwa stadia telur dari  Thrips parvispinus  merupakan yang paling tahan terhadap fosfin formula cair. Hal ini disebabkan stadia telur memiliki lapisan kutikula yang sulit ditembus gas dan letak telur berada dalam jaringan epidermis daun atau bunga. Hal ini jauh berbeda dengan stadia nimfa dan imago yang sangat peka terhadap fosfin.

Uji pengaruh fumigasi fosfin formula cair terhadap bunga potong krisan dan mawar

Pengaruh fumigasi fosfin formula cair terhadap kerusakan bunga potong krisan dan mawar pada konsentasi 250 ppm waktu papar 12 jam dan 15 jam  pada suhu 25 - 26 ^oC  dapat digambarkan   sebagai berikut (Tabel 2 dan Tabel 3).

Tabel 2.  Nilai skoring kerusakan bunga potong  krisan pasca fumigasi fosfin formula cair 250 ppm

Hari ke-	Kontrol	12 Jam	15 Jam
1	0	0       ns	0       ns
2	0	0.04  ns	0.06  ns
3	0.04	0.18  ns	0.24  ns
4	0.28	0.3   ns	0.36  ns
5	0.34	0.56 ns	0.56  ns
6	0.50	0.84 ns	0.56 ns
7	0.60	0.84  ns	0.56  ns

Ket. :  0 = tidak rusak  1 = sedikit rusak   2 = sangat rusak  ns = tidak berbeda nyata

Pada umumnya kontrol dan perlakuan pada bunga krisan maupun mawar yang ditempatkan di ruangan dengan pada suhu 26-28 ^oC  dengan kelembaban  50-70 % tidak begitu nyata perbedaannya dan pada hari ke-7 sudah mengalami kerusakan berat dan pada bunga mawar yang dimulai pada hari ke-3 sudah menunjukan kerusakan ringan. Kerusakan bunga meliputi kerusakan pada mahkota bunga yang mengalami layu dan rontok sedangkan daun layu dan mengering.  Kerusakan daun pada bunga potong krisan umumnya dimulai pada hari ke-5 tetapi sampai hari ke-7  umumnya mahkota bunga masih segar.

Tabel 3.  Nilai skoring kerusakan bunga potong  mawar pasca fumigasi fosfin formula cair 250 ppm

Hari ke-	Kontrol	12 jam	15 jam
1	0	0      ns	0      ns
2	0.12	0.4   ns	0.44  ns
3	0.44	0.42  ns	0.6    ns
4	0.6	0.6    ns	0.72  ns
5	0.72	0.76  ns	0.68  ns
6	0.92	2       ns	1.84  ns
7	2	2       ns	2      ns

Ket. :   0 = tidak rusak  1 = sedikit rusak   2 = sangat rusak  ns = tidak berbeda nyata

Uji validitas

Uji validitas pengaruh perlakuan  fosfin formula cair pada konsentrasi 250 ppm dengan waktu papar 12 jam pada suhu 25 - 26 ^oC  terhadap mortalitas Thrips parvispinus  diperoleh data sebagai berikut  (Tabel  4).

Tabel 4. Pengaruh fumigasi  250 ppm PH₃ dengan waktu papar 12 jam  terhadap Mortalitas (%) Thrips parvispinus

Perlakuan (Jam)	Ulangan		Stadia
		Nimfa	Imago	Telur
Kontrol		0	0	Menetas
12	U1	100	100	Menetas
	U2	100	100	Menetas
	U3	100	100	Menetas
	U4	100	100	Menetas
	U5	100	100	Menetas
	U6	100	100	Menetas

Oleh karena  pada konsentrasi  250 ppm waktu papar 12 jam tidak efektif membebaskan seluruh stadia Thrips parvispinus maka dilanjutkan  pada konsentrasi 300 ppm dan 380 ppm dengan waktu papar 12 jam pada suhu 25 - 26 ^oC  dan diperoleh data persentase  mortalitas dan  nilai kerusakan bunga potong pada kondisi penyimpanan  suhu 26-28 ^oC kelembaban 50-70 % sebagai berikut (Tabel 5, Tabel 6 dan Tabel 7).  

Tabel 5. Mortalitas (%) Thrips parvispinus  dengan waktu papar 12 jam

Perlakuan (kons)	Ulangan		Stadia
		Nimfa	Imago	Telur
Kontrol		0	0	Tidak menetas
300 ppm	U1	100	100	Tidak menetas
	U2	100	100	Menetas
	U3	100	100	Menetas
	U4	100	100	Tidak menetas
	U5	100	100	Tidak menetas
	U6	100	100	Tidak menetas
380 ppm	U1	100	100	Tidak menetas
	U2	100	100	Tidak menetas
	U3	100	100	Tidak menetas
	U4	100	100	Tidak menetas
	U5	100	100	Tidak menetas
	U6	100	100	Tidak menetas

Uji validitas pengaruh perlakuan fosfin formula cair pada konsentrasi 380 ppm waktu papar 12 jam  suhu 25 - 26 ^oC  selanjutnya diulang dan dilakukan penyimpanan pada kondisi berbeda dengan perlakuan sebelumnya,  penyimpanan dilakukan pada suhu ≤ 10 ^oC  dengan kelembaban 80-90% terhadap bunga potong krisan dan mawar pada pengamatan hari ke-7  tidak ada kerusakan pada perlakuan maupun kontrol.

Tabel 6. Nilai skoring kerusakan bunga potong  krisan pasca fumigasi fosfin formula cair waktu papar 12 jam

Hari ke-	300 ppm	380 ppm	Kontrol
1	0 ns	0 ns	0
2	0 ns	0 ns	0
3	0 ns	0 ns	0
4	0.02 ns	0 ns	0
5	0.02 ns	0 ns	0
6	1 ns	1 ns	1
7	1 ns	1 ns	1

Ket. :   0 = tidak rusak  1 = sedikit rusak   2 = sangat rusak  ns = tidak berbeda nyata

Tabel 7. Nilai skoring kerusakan bunga potong  mawar pasca fumigasi fosfin formula cair waktu papar 12 jam

Hari ke-	300 ppm	380 ppm	Kontrol
1	0 ns	0 ns	0
2	0 ns	0 ns	0
3	0.07 ns	0.02 ns	0.05
4	0.08 ns	0.02 ns	0.05
5	1.1 ns	0.95 ns	1.03
6	1.9 ns	1.9 ns	2
7	2 ns	2 ns	2

Ket. :   0 = tidak rusak  1 = sedikit rusak   2 = sangat rusak  ns = tidak berbeda nyata

Dari hasil  uji  validasi  fumigasi fosfin formula cair terhadap thrips  pada bunga potong  krisan dan mawar pada konsentrasi  250 ppm dengan waktu papar  12 jam  pada  suhu  25 - 26 ^oC  diketahui  bahwa  stadia telur belum mengalami mortalitas 100%  sehingga memerlukan konsentrasi  yang lebih tinggi dari 250 ppm atau waktu papar yang lebih lama dari  12  jam. Hal ini sejalan dengan hasil penelitian Carpenter et al. 2002, bahwa untuk mengendalikan Thrips tabaci pada bawang ekspor di New Zealand dengan menggunakan liquefied phosphine pada kisaran konsentrasi yang rendah 200-300 ppm selama 24 jam sudah dapat menyebabkan angka mortalitas yang tinggi pada nimfa dan dewasa tetapi sangat sulit untuk telur. Peningkatan  konsentrasi lebih diperlukan untuk mencapai mortalitas telur 100 % dibandingkan dengan penambahan waktu karena telur berada di dalam jaringan daun atau bunga sehingga memerlukan penetrasi fosfin maupun CO₂ yang  konsentrasinya lebih tinggi agar dapat menembus jaringan tanaman dan kutikula telur.  Selain itu,  perlakuan  lebih dari 12 jam berisiko adanya perubahan suhu yang sangat tinggi yang akan berpotensi merusak kualitas bunga dan penanganan bunga potong memerlukan waktu yang singkat agar cepat sampai ke konsumen. Sehingga dilakukan pengujian validitas selanjutnya dengan menaikkan konsentrasi sebesar 300 ppm dan 380 ppm dengan waktu papar 12 jam pada suhu 25 - 26 ^oC  dengan kelembaban 50-70%.

Pengujian validitas pada konsentrasi 300 ppm dan 380 ppm dengan waktu Papar 12 jam pada suhu 25-26 ^oC dengan kelembaban 50-70%. Di dapatkan hasil bahwa pada konsentrasi 300 ppm telur thrips masih belum mencapai mortalitas 100% sedangkan pada konsentrasi 380 ppm mortalitas telur sudah mencapai 100%. Kerusakan pada tanaman krisan terjadi pada hari ke 6 sedangkan kerusakan pada tanaman mawar terjadi pada hari ke 3. Hal ini tidak berbeda nyata dengan kontrol.

Pengujian validitas dengan waktu papar 12 jam dan penyimpanan pasca fumigasi pada suhu ≤ 10 ^oC dengan kelembaban  80-90% tidak menyebabkan kerusakan baik pada bunga krisan maupun mawar. Pada bunga krisan tidak ada kerusakan yang di simpan selama 7 hari pada suhu ≤ 10 ^oC  dengan kelembaban  80-90 % di ikuti 6 hari pada suhu  26-28 ^oC  dengan kelembaban  50-70 % setelah fumigasi perlakuan tidak berbeda nyata dibandingkan dengan kontrol. Dengan demikian pasca fumigasi dapat dilakukan penyimpanan selama 7 hari dan dapat bertahan ditempatkan di suhu ruang sampai  6 hari, sehingga umur bunga potong dapat mencapai  2 minggu. 

KESIMPULAN

1.   Stadia  telur  merupakan  yang paling tahan  terhadap  fosfin formula cair  (liquefied phosphine).

2.   Perlakuan fumigasi  fosfin  cair (liquefied phosphine)  250 ppm dengan waktu papar  12 jam  pada  suhu 25-26 ^oC  belum dapat mengeradikasi  telur    Thrips parvispinus.

3.   Untuk membebaskan bunga potong krisan dan  mawar  dari  infestasi  telur Thrips parvispinus diperlukan fumigasi dengan konsentrasi 380 ppm  dengan waktu papar  12 jam  pada  suhu 25 - 26 ^oC.

4.   Perlakuan fumigasi  fosfin  cair (liquefied phosphine)  380 ppm dengan waktu papar  12 jam  pada  suhu 25-26 ^oC  belum merusak  bunga potong  krisan maupun mawar.

UCAPAN TERIMA KASIH

Terima kasih  disampaikan kepada Dr. Ir. Antarjo Dikin MSc., Dr. Ir. Bagus Kukuh Udiarto, MSi,  Dr. Ir. Idham S. Harahap,  Dr. Ir. I. Jatnika, MSc  atas dukungan, bantuan dan kerjasamanya pada pelaksanaan uji terap ini.

DAFTAR PUSTAKA

Carpenter  A., Van Epenhuijsen C.W., Brash D.W., Zhang Z. 2002. Eco2fume for control of onion Thrips. New Zealand Institute for Crop & Food Research Limited, Private Bag 11600 ,Palmerston North.

Direktorat Jenderal Hortikultura. 2013. Volume impor dan ekspor florikultura 2012. http://hortikultura.deptan.go.id/. Diakses 3 Januari 2014.

Karunaratne C, GA Moore, R Jones, R Ryan. 1997. Phosphine and its effect on some common insects in cut flowers . Postharv. Biol. Technol. 10: 255-262.

Liu YB. 2008. Low temperature phosphine fumigation for postharvest control of western flower thrips (Thysanopthera; Thripidae) on lettuce, broccoli, asparagus, and strawberry. Journal of Economic Entomology. Vol. 101, 6: 1786-1791.

Park MG, Sung BK, Tumambing J. 2012. Effect of PH3 and CO₂ mixture as a quarantine fumigant in cut flowers. National Plant Quarantine Service (NPQS), Ministry for Food, Agriculture, Forestry and Fisheries of Korea. South Korea. 

ASAP CAIR BISA MEMBUNUH NEMATODA

PERLAKUAN PENCELUPAN  ASAP CAIR  UNTUK  MENGELEMINASI NEMATODE  

A. besseyi   PADA BENIH PADI (Oryza sativa  L.)

M. Achrom

Rekamaya @ gmail.com

Balai Uji Terap Teknik dan Metode Karantina Pertanian

Jl Raya Kampung Utan-Setu Bekasi  Jawa Barat

Abstrak

Aphelenchoides besseyi  merupakan nematada penting yang bersifat  tular benih  yang dikategorikan sebagai  Organisme Pengganggu Tumbuhan Karantina  (OPTK) kategori A2 yang harus dicegah masuk dan menyebarnya di Wilayah Republik Indonesia. Untuk membebaskan nematoda dari benih padi perlakuan sangat diperlukan dan perlakuan pencelupan dengan larutan asap cair merupakan sebagai alternatif. Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui pengaruh perlakuan pencelupan larutan asap cair terhadap mortalitas A. besseyi  dan indek vigor serta daya kecambah benih padi var. Ciherang.  Rancangan percobaan menggunakan  Rancangan Acak Lengkap dengan 6 perlakuan (Kontrol, 1 %, 2 %, 3%, 4%, 5% asap cair)  diulang 4 kali .  Benih padi dilakuan pencelupan selama 10 menit dalam larutan asap cair yang selanjutnya dikeringkan kembali.   Untuk menghitung mortalitas dilakukan ekstrak nematoda sedangkan untuk uji vigor hari ke-5 dan daya kecambah hari ke-14 dilakukan uji kertas digulung plastik. Hasil penelitian menunjukan bahwa perlakuan pencelupan benih padi pada larutan asap cair konsentrasi 5 persen selama 10 menit  dapat menyebabkan mortalitas A. besseyi  rata-rata 89,57 %  tanpa menurunkan  indek vigor dan daya kecambah benih padi.

 Kata kunci :  A.  besseyi , Asap cair , mortalitas , daya kecambah, indek vigor

METODE SAMPLING TANAH UNTUK IDENTIFIKASI NEMATODA

I. Pendahuluan

Nematoda merupakan salah satu organisme pengganggu penting selain serangga, bakteri, cendawan dan virus yang dapat menyerang tanaman / bagian tanaman, dan sangat merugikan ekonomi apabila nematoda tersebut sudah menyerang tanaman / bagian tanaman perkebunan maupun hortikultura kita secara meluas. Beberapa jenis nematoda parasit tanaman dapat menjadi perhatian, misalnya di kebun Albamas, penanaman landscape setiap tahunnya kehilngan hasil yang disebabkan oleh nematoda berkisar antara 5 sampai 10 % pertahun (Gazaway, 1995). Di bagian tenggara dunia, dimana lingkungan menguntungkan bagi reproduksi nematoda, kehilangan hasil dapat lebih tinggi.

Contoh lain Heterodera saccari yang menyerang tanaman padi di Norwegia (Babatola, 1984) mengalami penurunan produksi panen maksimum hingga 70 % (Coyne and Plowright, 1998 dalam Compendium 2000). Nematoda Hirschmaniella oryzae telah menginfeksi 58 % tanaman padi di seluruh dunia sehingga dapat menyebabkan kerugian produksi panen hingga 25 % (Hollis and Keoboonrueng, 1984 dalam Copemdium 2000). Contoh lainnya adalah Radopholus similes merupakan parasit penting yang menyerang tanaman pisang secara migratory endoparasit (Gowen and Queneherve, 1990 dalam Compendium 2000), nematoda yang sama juga telah dilaporkan menyerang jahe hampir separuh dari luas Negara Fiji dengan rata-rata serangan 10 – 50 % (Koshy and Bridge, 1990).

Nematoda parasit menghendaki tinggal pada tanaman untuk bereproduksi & hidup dalam waktu yang lama. Tidak ada tanaman atau bagian tanaman yang bebas dari daya tarik nematoda, nematoda memakan akar-akar tanaman menghisap air & memakan makanan yang dihasilkan tanaman, sehingga dapat melemahkan seluruh bagian tanaman.

Berdasarkan sifat hidupnya nematoda parasit pada tanaman dibagi menjadi dua golongan, yaitu nematoda parasit akar yang hidupnya di dalam tanah, dan nematoda parasit yang hidupnya di atas permukaan tanah, nematoda parasit akar, hidup di dalam tanah, di dalam tanaman atau disekitar tanaman. Sedangkan nematoda parasit di atas permukaan tanah, mulai siklus hidupnya pada tanah atau di permukaan tanah. Seringkali pada sisa-sisa tanaman inangnya, tetapi apabila kemudian ada tanaman inang yang cocok, maka nematoda tersebut naik kebagian tanaman dan menyerang batang, cabang, petiol, daun ataupun biji.

Penyebaran nematoda di dalam tanah biasanya tidak teratur, pada umumnya berhubungan erat dengan penyebaran akar-akar tanaman dan daerah sekelilingnya yang berdekatan dengan akar, pergerakan nematoda di dalam terbatas hanya beberapa meter saja pertahun. Jumlah nematoda parasit tanaman lebih besar pada tanah-tanah yang ditanami dari pada tanah kosong. Nematoda biasanya berkumpul pada lapisan teratas kurang lebih setebal 30 cm. Menurut pemdapat para ahli pada lapisan tanah setebal 2,5 cm mengandung kurang lebih 15 juta ekor nematoda pertahun.

Nematoda parasit tanaman pada umumnya menghuni daerah perakaran, oleh karena itu populasi tertinggi dijumpai di sekitar daerah perakaran. Apabila nematoda itu terdapat di dalam tanah dengan tanaman inang yang cocok populasi akan meningkat selama akar tanaman tersebut masih sehat. Sebaliknya populasi akan menurun apabila sistim perakaran dari tanaman yang diserang tersebut telah rusak.

Dalam ketiadaan tanaman inang, populasi nematoda akan menurun dengan cepat, untuk stadia tertentu, karena mekanisme hidupnya mempunyai kemampuan untuk tetap tinggal di dalam tanah selama jangka waktu tertentu tanpa makan. Apabila makanan cocok bahkan mungkin populasinya akan meningkat, karena makan cukup tersedia.

Faktor lingkungan sangat mempengaruhi keadaan tanaman dan nematoda di dalam tanah maupun dalam akar, serta keadaan tanah itu sendiri. Dalam hubungannya dengan reaksi terhadap lingkungan, tanaman juga dapat mempengaruhi perkembangbiakan nematoda. Sebaliknya dengan merusak tanaman, nematoda mempengaruhi pertumbuhan tanaman tersebut. Dengan demikian ada hubungan timbal balik antara nematoda, tanaman dan keadaan lingkungan. Faktor-faktor lingkungan yang mempengaruhi kehidupan nematoda adalah tanah, iklim, dan tanaman.

Tekstur tanah adalah ukuran partikel (butir-butir) tanah, tanah yang bertekstur kasar, biasanya mengandung persentase pasir yang tinggi dan pori-pori tanah yang besar. Tanah yang demikian lebih cepat menjadi kering dari pada tanah yang bertekstur halus dan berpori kecil. Menurut penelitian para ahli, Heterodera spp. (nematoda kista), Meloidogy spp. (nematoda buncak akar), Pratylenchus spp. (nematoda luka akar) dan Trichodorus spp. terdapat dalam jumlah yang banyak pada tanah bertekstur pasir kasar. Ditylenchus dipsaci (nematoda yang menyerang batang) heterodera sachachtii (nematoda yang menyerang gula bit), beberapa species Pratylenchus spp. banyak dijumpai pada tanah berstekstur liat. Sedangkan Tylenchus semipenetrans (nematoda yang menyerang jeruk) banyak dijumpai pada tanah bertekstur pasir dan liat.

Kecepatan bergerak nematoda di dalam tanah berhubungan dengan diameter pori-pori tanah, ukuran partikel tanah, diameter nematoda dan ketebalan lapisan air tanah. Seekor nematoda tidak dapat bergerk diantara partikel-partikel tanah, apabila diameter pori-pori tanah lebih kecil daripada diameter nematoda tersebut.

Sampling tanah dan akar tanaman untuk adalah komponen penting dari diagnosa penyakit tanaman, suatu tanaman yang diserang nematoda dapat salah duga dengan defesiensi unsur hara atau penyakit lain. Teknik dan praktek untuk mengkoleksi akar, jaringan daun atau batang, demikian juga sampel tanah adalah komponen yang harus diperhatikan dalam diagnosa suatu penyakit tanaman. Konsep Integrated Pest Management (IPM) dan Integreted Crop Production adalah sangat berguna. Pengetahuan mengenai populasi nematoda dapat memperbaiki metoda pengujian, biasanya data dari hasil metoda ektraksi tidak bisa mewakili dari area sebaran nematoda tanpa dengan pengambilan sampel yang tepat. Akar tanaman merupakan sampel diagnosa efektif (seperti puru akar yang di sebabkan oleh Meloidegony spp).

Sampling tanah adalah dasar untuk determinasi & mengetahui penyebaran nematoda parasit tanaman. Negara-negara maju menghendaki surat kesehatan tanaman atau media tempat tumbuh tanaman bebas dari nematoda, melalui Karantina atau peraturan kesehatan tanaman lainnya untuk mengeluarkan sertifikat bebas nematoda.

Oleh karena itu metoda pengambilan tanah dan akar untuk analisa nematoda sangat diperlukan agar mendapatkan tanaman, produk hasil tanaman dan media tumbuh tanaman benar-benar bebas dari nematoda, disamping itu untuk mengetahui jumlah dan jenis-jenis nematoda yang terdapat pada media tersebut.

II. METODE SAMPLING

A. Waktu Pengambilan Sampel

Umumnya waktu pengambilan sampel untuk nematoda bervariasi menurut jenis, umur, dan stadia-stadia tertentun tanaman yang di serang nematoda. Hasil penelitian Auburn University (W. Gazaway ,1995). waktu pengambilan sampel untuk nematoda yaitu pada priode populasi nematoda tinggi, sehingga nematoda-nematoda tersebut cepat dapat terdeteksi.

:

Rekomendasi pengambilan sampel untuk specific tanaman yaitu

Jenis Tanaman	Waktu yang baik untuk sampling
Jagung	Agustus-Oktober
Kapas	September-Oktober
Kacang tanah	Agustus
Kedele	September-Oktober
Tomat	Juni-September
Kentang	Mei -Agustus

Beberapa faktor yang harus diperhatikan pada saat pengambilan sampel :

a) Sampel harus diambil sebelum pengolahan tanah dan sebelum tanam.

b) Sampel diambil pada saat nematoda aktif dan populasi tinggi

c) Tanah harus berair tetapi tidak sangat dingin atau beku

d) Jika aplikasi pestisida untuk aplikasi untuk program pengendalian nematoda, sampel harus diambil sebelum aplikasi, tetapi sebelum penanaman untuk tujuan identifikasi

e) Waktu yang tepat untuk sampling adalah sebelum panen, untuk persiapan musim tanam selanjutnya, khususnya untuk tanaman gula bit atau tanaman kentang.

f) Jangan mengumpulkan sampel ketika tanah kering atau sangat basah, dimana populasi nematoda umumnya sangat rendah pada kondisi tersebut..

B. Peralatan Pengambilan Sampel

Peralatan yang digunakan untuk pengumpulan sampel tanah untuk pengujian nematoda yaitu : Sekop, garu tanah atau tabung, alat pengambil sampel bermotor atau tabung sampling type T, dimana "T" type sampling adalah alat yang ideal untuk mengumpulkan beberapa type sampel tanah untuk analisa nematoda..

. Alat sampling type T"

C. Pemetaan Lapang

Penyebaran nematoda jarang seragam atau tidak konstan, tetapi sangat cepat. Hampir setiap waktu terjadi penyebaran yang tidak sama, sehingga perlu pemetaan sebagai informasi tambahan. Beberapa observasi terdahulu, perubahan tanaman, tektur tanah, kadar air dan pola pengairan atau sejarah tentang penanaman dapat menjadi keterangan tambahan

D. Jumlah dan Ukuran Sampel

Ukuran sampel dipengaruhi oleh area dan tanaman yang akan disampling. Nilai tanaman dan informasi tambahan yang dikumpulkan selama pengambilan sampel . Ukuran sampel diatur pada batasan jumlah titik sampel tanah yang ditentukan. Estimasi ketelitian dari hasil nematoda dapat diperbaiki dengan meningkatkan jumlah titik sampel tanah. Ini juga tidak mahal dari pada peningkatan jumlah aktual sampel. Aturan yang digunakan untuk memperkirakan biaya di alokasikan dengan pertimbangan 1 (satu) persen dari totalbiaya produksi tanaman untuk sampling nematoda.

Pendekatan yang baik pada sampling yaitu mencurahkan tanah yang terkumpul pada wadah yang bersih, campur dengan rata dan kirim satu quart (1.136 liter) atau sedikitnya 500 cc untuk diproses. Satu sampel mungkin digunakan mewakili lebih dari lima acres (20.350 m2) dari subdivisi area yang seragam yang dibedakan dengan pemetaan. Masing-masing sampel dapat berisi sekurangnya 20 titik, atau jika mewakili kurang 5 acre, sedikitnya empat titik peracre. Tempatkan sampel pada kantong yang kuat dan mempertahankan kelembaban dan mudah dikenali dengan menambahkan label dibagian luarnya. Label dibagian dalam kantong dapat mudah basah dan luntur.

Nematoda jarang terjadi seragam dilapangan, lebih dari satu subsampel diambil dari beberapa areal. Jumlah dari subsampel yang diperlukan dipengaruhi ukuran areal. Untuk areal yang kecil (kurang dari 4 acre) kumpulkan 20 subsampel. Sedangkan untuk areal yang luas (lebih dari 4 acre), pisahkan area kedalam bagian masing-masing 4 acre dan kumpulkan sekurangnya 20 subsampel untuk setiap bagian. Jika area terdiri dari beberapa jenis tanah, pisahkan area pada beberapa bagian sesuai dengan jenis tanah. Kumpulkan stidaknya 20 subsampel setiap bagian.

A B

C D

Untuk tanaman yang rapat , kumpulkan sekurangnya20 subsampels dari masing-masing bagian empat acre Mengacu pada gambar A.

Untuk tanaman berjalur, kumpulkan subsampels dari zona perakaran mengikuti jalur. Mengacu pada gambar B.

Untuk tanaman menahun, kumpulkan dua subsampels dari garis titik untuk masing-masing tanaman. Mengacu pada gambar C.

Untuk tanaman tunggal seperti pohon atau semak, kumpulkan sepuluh subsampels: lima dekat batang dan lima dari garis titik Mengacu pada gambar D.

E. Tempat Pengambilan Sampel

Contoh tanah dapat diambil dari zona perakaran tanaman. Jika tanaman sudah tidak ada, ambil contoh pada bakal zona perakaran. Contoh tanaman diambil dari bagian tanaman yang menunjukan gejala, jika ada. Contoh tanah atau tanaman dapat diambil dari area yang bermasalah yang menunjukan gejala dan dari area yang tidak terjangkit untuk perbandingan. Kedalaman dari zona perakaran bervariaisi tergantung pada jenis tanaman. Untuk tanaman setahun dan rumput-rumputan sedalam 6 inchi.

Sebelum menanam tanaman setahun, contoh dari lapangan harus diambil pertama kali dan dibuang sedalam 2 (dua) inchi dari atas permukaan tanah., dan pengambilan contoh dengan kedalaman 15-20 inchi. Alat penggalian harus lebih dari 30 inchi dan harus lebih panjang lagi pada kondisi kering atau beku.

III. Penanganan Sampel

Penanganan sampel meliputi pelabelan, pengepakan, penyimpanan dan pengiriman ke laboratorium pengujian. Dalam penanganan sampel perlu diperhatikan hal-hal sebagai berikut :

a) Jika contoh diambil lebih dari satu tempat , harus dilabel dengan tinta permanen pada masing-masing kantong dapat juga menulis pada label yang diletakan pada kantong. Jangan menyimpan label kertas di dalam kantong ia akan bercampur dan dapat tak dapat dibaca. Jika terdapat beberapa contoh kiriman yang dibungkus bersama masing –masing pada kertas Koran pelabelan jangan tertutup.

b) Sampel tanah harus disimpan pada kantong plastik. Disegel untuk menjaga tidak kering dan dimasukan pada kotak karton sampling Segel kantong plastik untuk menjaga kadar air, contoh yang kering tidak bagus unuk diagnosa nematoda. . Nomor sampel dan asalnya harus dicatat pada setiap karton

c) Hindarkan sampel terhadap panas matahari karena nematoda akan berpengaruh jelek oleh temperature yang ekstrim, panas dan sinar UV akan membunuh nematoda. Beberapa menit pada dasbor atau dibelakang dari pick up atau pada kendaraan yang tertutup, akan meberikan kondisi yang tidak baik. . Penyimpanan sampel pada kondisi yang tidak baik akan menghasilkan ketidak akuratan, yang memberikan rekomendasi yang tidak baik. Apabila menyimpan contoh lebih dari satu hari atau jika sampel tidak dikirim segera sebaiknya disimpan dilemari es tetapi tidak beku. pada 55 ^o F.

d) Tangani contoh dengan hati-hati dan dikemas dengan baik. Nematoda berada diantara patikel tanah, jadi dengan bantingan akan menjadi rusak.

e) Isikan Informasi pada formulir pengujian nematoda dan disertakan pada kantong sampel nematoda untuk identifikasi. Jaga penulisan data dari nomor dan asal dari masing –masing sampel. Dalam pemesanan untuk digunakan sebagai rekomendasi. Informasi yang diberikan mengikuti : a ). Sejarah tanaman b). Tanaman yang akan ditanam, c). nama lokasi, jenis dan tekstur tanah, gejala yang diamati, tanggal perlakuan nematisida terakhir. Juga informasi ini meliputi nama dan alamat dimana laboratorium yang diharapkan hasilnya disurati, dapat ditempatkan pada lembaran informasi untuk sampel tanah nematoda

Gambar sampel tanah yang dibungkus plastik.

Gambar Pelabelan karton kiriman sampel

DAFTAR PUSTAKA

1. Anonim . 2001. Proseding Pelatihan Nematologi. Pusat Karantina Pertanian.Jakarta.

2. http://ipm.ncsu.edu/corn/Scouting_Corn/soil_sampling.html

3. http://ipm.ncsu.edu/corn/Scouting_Corn/soil_sampling.html Nematode Assay Laboratory 115 Price HallVirginia Tech Blacksburg, VA 24061-0331

4. http://www.aces.edu/pubs/docs/A/ANR-0114/ANR-0114.html .1955. Collecting Soil and Root Samples for Nematode Analysis

5. Saad L. Hafez. http://www.uidaho.edu/sugarbeet/nmtds/cis1056.htm Sampling Procedure to Diagnose Nematode Infestations

6. William T. Crow and Frank E. Woods. 2007. Nematode Assay Laboratory. http://edis.ifas.ufl.edu/SR011

FUMIGATION RESEARCH

false smut in rice seed

KAJIAN LAPANG RESPON PADI HYBRIDA TERHADAP SERANGAN CENDAWAN FALSE SMUT

(USTILAGINOIDEA VIRENS (CKE.) TAK. (1896)

OLEH : M. ACHROM

POPT MUDA BALAI BESAR KARANTINA PERTANIAN TANJUNG PRIOK

Padi hybrida telah menolong China untuk meningkatkan produksi padi mendekati 200 juta ton dari tahun 1976-1991. padi hybrida telah memberikan keuntungan lebih dari 30% dari varietas konvensional. Area pertanaman padi hybrida seluas 17.6 juta hektar sekitar 55 persen total area penanaman padi di China dan telah memproduksi padi hybrida 66 persen dari total padi yang dihasilkan. Walaupun penelitian pada penggunaan secara komersial dari heterosis pada padi telah diperbuat yang telah memberikan keuntungan sejak 20 tahun yang lalu, sebagai pandangan strategi, bahwa potensi hasil dari padi hybrida belum dapat sepenuhnya diperoleh.

Indonesia dengan penduduknya yang makanan pokoknya beras, beberapa tahun yang lalu masih belum dapat memenuhi kebutuhan beras nasional sehingga masih mengandalkan beras impor dari negara tetangga seperti Vietnam dan Thailand. Untuk meningkatkan produksi beras dan menjadikan Indonesia swasembada beras, maka pemerintah mempunyai strategi dengan cara menggalakan penggunaan benih hybrida baik dari produksi luar negeri (impor) maupun hybrida lokal.

Dari hasil pengamatan POPT Karantina Tumbuhan melalui kegiatan Pemantauan OPT/OPTK diketahui bahwa varietas hybrida banyak mengalami kendala terutama adanya serangan organisme pengganggu tumbuhan lokal antara lain penggerek batang , wereng coklat , cendawan bulir (false smut) yang disebabkan oleh Ustilaginoidea virens (Cke.) Tak. (1896).

Ustilaginoidea virens (Cke.) Tak. (1896) [anamorph] dengan nama umum false smut , termasuk kedalam kingdom fungi ,Phylum: Anamorphic fungi dengan nama lain :Ustilago virens Cooke 1878 [anamorph], Tilletia oryzae Patouillard 1887 [anamorph],Ustilaginoidea oryzae (Pat) Brefeld [anamorph],Sphacelotheca virens Omori 1896 [teleomorph], Claviceps virens (Cke) Sakurai [teleomorph], Claviceps oryzae-sativae Hashioka (1971) [teleomorph]. Cendawan ini pertamakali digambarkan oleh Cooke pada tahun 1878 dengan specimen dasar dari India dengan nama Ustilago virens. Patouillard (1887) memberi nama specimen dari Jepang sebagai Tilletia oryzae, yang mana belakangan diganti oleh Brefeld (1895) menjadi Ustilaginoidea oryzae (Pat) Brefeld. Takahashi (1896) memberi nama Ustilaginoidea virens (Cke.) Tak.: nama ini untuk anamorph. Bentuk teleomorph disebut Sphacelotheca virens (Omori, 1896) and Claviceps virens (Cke.) Sakurai. Hashioka (1971) menyediakan nama Claviceps oryzae-sativae for the teleomorph.

Inang utama dari cendawan ini adalah padi Ustilaginoidea virens (Cke.) Tak. (1896) juga telah dilaporkan pada jagung di Louisiana (USA) dan Panama. Di India dilaporkan pada Oryza officinalis (Rao and Reddy, 1955), pada Chinachne koenigii, Digitaria marginata (Shetty and Shetty, 1985), Panicum trypheron (Shetty and Shetty, 1987), dan pada jagung di Kashmir (Sharma and Chaudhary, 1986). Cendawan ini menyerang pada stadia pembuahan dan bagian yang diserang adalah malai dan biji. Pengaruh yang diakibatkan oleh penyakit ini yaitu menyebabkan berat biji berkurang,kualitas beras berkurang, dan serangan yang berat pada biji menyebabkan beras tidak dapat dimasak karena adanya perubahan warna.

Ustilaginoidea virens (Cke.) Tak. (1896) dilaporkan menyebar di Asia, Afrika, Australia dan Oceania, Amerika utara, Amerika tengah dan selatan, India barat dan Italy.

Ustilaginoidea virens (Cke.) Tak. (1896) membentuk biji individual pada panicle pada spora bola dengan awal nampak berwarna putih perak, selanjutnya menjadi jingga dan akhirnya hijau, coklat atau hitam pada saat matang. Bola tersebut mempunyai penampilan velvety dari stadia jingga untuk matang, dengan permukaan luar ditutupi oleh chlamydospores (conidia).

Gambar 1. Gejala serangan pada biji padi (kiri) (IRRI)

Penyakit ini hadir pada musim hujan dengan kelembaban tinggi, Penyakit ini menyukai temperatur dengan kisaran 23^oC (minimum) sampai 31^oC (maximum), dengan kelembaban 96 % dan hari berawan sejak periode pembungaan (Singh, 1984). Area tanam dengan kondisi pemupukan yang tinggi dengan nitrogen tinggi, disukai untuk pertumbuhan vegetatif padi, dimana sangat peka terhadap penyakit (Ikegami, 1960). Seringkali irigasi meningkatkan kelembaban, yang mana disukai penyakit false smut di Bihar India (Bhagat and Prasad, 1996). pH optimum dan temperature untuk perkecambahan chlamydospore pada pH 5.8-6.3 dan 28°C, berturut-turut ;gula dan cahaya mendukung perkecambahan chlamydospore . pH optimum dan temperature untuk pertumbuhan mycelial yaitu pH 4.92-6.98 dan 25-28°C, berturut-turut.

Dari pengamatan di lapangan di sentra produksi padi Jawa Barat terhadap beberapa varietas padi hybrida diketahui bahwa pada kondisi musim kemarau penyakit ini masih dapat menyerang padi hybrida dan tidak pada padi non hybrida, begitu juga di negara asal hibrida yaitu China penyakit ini merupakan penyakit utama tanaman padi hibrida. dan juga di laporkan di Pakistan bahwa False smut merupakan penyakit utama pada penanaman padi hybrida. Di India, padi hybrida dengan menggunakan beberapa kultur praktis dilaporkan diproduksi 6 ton/Ha saat musim kering tetapi pada musim hujan hanya dihasilkan 3 ton/Ha diakibatkan oleh penyakit false smut. Penyakit ini menjadi masalah yang serius di wilayah perbukitan dan kaki bukit Uttar Pradesh, India. Padi hybrida berbeda dengan padi non hybrida yaitu biji terbuka sehingga sangat peka terhadap hama dan penyakit yang bersifat terbawa benih, diantaranya false smut.

Gambar 2. Serangan Ustilaginoidea virens (Cke.) Tak. (1896)

pada padi hybrida Varietas Sembada di Huan China September 2008 (Suyatman)

Gambar 2. Serangan Ustaligonoidea virens pada padi Hybrida Varietas

Intani 1 di Desa Karang Wangi Kec. Binong Kab. Subang Juli 2008 (M. Achrom)

Gambar 3. Serangan Ustilaginoidea virens (Cke.) Tak. (1896)

padi padi hybrida Varietas Hibrindo1 di Kec.Cibuaya

Kab.KarawangJuni 2007 (Agusman Jaya)

Gambar 4. Serangan Ustilaginoidea virens (Cke.) Tak. (1896)

pada padi Hybrida Varietas. Bernas Super di Kec. Cabang Bungin

Kabupaten Bekasi Mei 2007 (Suyatman)

Dari beberapa informasi yang dapat terkumpul , dapat disimpulkan bahwa ketahanan padi hybrida terhadap serangan penyakit false smut (Ustilaginoidea virens (Cke.) Tak. (1896)) sangat rendah sehinggi diperlukan penelitian-penelitian lebih lanjut untuk menciptakan varietas padi hybrida yang tahan terhadap OPT diantaranya tahan terhadap penyakit false smut ini.

Pustaka :

Anonimous. 2007. Hybrid Rice in Asia: Sowing the Seeds of Dependency Southeast Asia Regional Initiatives for Community Empowerment (SEARICE). Pesticide Action Network Asia and the Pacific (PAN AP), Penang, Malaysia

http://oryza.com/Asia-Pacific/Pakistan-Market/pakistan-rice-crop.html.Pakistan: Rice crop under threat from hybrid seeds , By Oryza News on May 15,2007.

http://www.knowledgebank.irri.org/RP/fungDiseases/False_Smut/ Economic_Importance.htm.

http://www.knowledgebank.irri.org/RiceDoctor/Fact_Sheets/Diseases/ False_Smut.htm

www.ikisan.com/links/ap_riceHybridRice.shtml -

Achrom M, Jarot S. Nolis H, 2008. Laporan Hasil Pemantauan OPT/OPTK di Kabupaten Subang Tahun 2008.

CABI. 2007. Crops Protection Compedium. UK.

Cucu umi K. dkk. 2007. Laporan Hasil Pemantauan OPT/OPTK di Kabupaten Karawang. Tahun 2007

LI Yu-Sheng,ZHU Zhen,ZHANG Ya-Dong,ZHAO Ling,WANG Cai-Lin*. Genetic Analysis of Rice False Smut Resistance using Major Gene Plus Polygene Mixed Genetic Model

Suyatman dkk. 2007. Laporan Hasil Pemantauan OPT/OPTK di Kabupaten Bekasi 2007.